发布日期:2018-11-13 10:02 来源:活性炭网 作者:活性炭网 浏览数:
本研究旨在确定发酵的 Chimonobambusa quadrangularis shoot(FCQS)对昆明小鼠活性炭性便秘 的预防作用 。 与未发酵的新鲜 C. quadrangularis 相比,FCQS具有更松散的纤维组织结构 射击(CQS),这是
Chimonobambusa quadrangularis(Fenzi)Makino,属于Gramineae Bambusoideae Chimonobambusa(1),主要生长在西南部的高海拔丛林中,其枝条是天然的优质食物(2)。方形竹子通常在秋季成熟,这与其他类型的竹子不同。方形竹笋营养丰富,包括蛋白质,脂肪,碳水化合物,纤维素,维生素C,维生素B和其他矿物元素,如钙,磷,铁,锌和硒(3)。发酵改善了食物的质量,包括其味道和营养成分的比例,而微生物的发酵改善了竹笋中膳食纤维的生理功能(4)。
在现代社会中,便秘是一种常见的生理状态,患有便秘经历的个体会减少排便(5)。此外,排便量减少,排便困难是缺水的结果(6)。由于目前的工作条件,约70%的个体处于胃病和便秘的次优状态(7)。可能改善这些状况的食物包括健康食品(如绿茶,韩国泡菜)和功能性食品(如大豆低聚糖,膳食纤维),有助于恢复正常功能,改善便秘的食品是一种重要而有效的方法。改善肠道健康(8)。竹笋中的纤维已被证明对抑制便秘有很好的效果(9),据报道,竹笋中的膳食纤维可以通过发酵得到改善,因此它对便秘的影响也可能得到改善(10) 。
活性炭能够减少肠道蠕动并延缓肠内容物的通过,这可能在正常条件下给药时导致便秘(11)。活性炭已成为检测食物对抑制便秘影响的重要实验方法(12)。本研究采用活性炭诱导小鼠便秘,观察发酵竹笋对便秘的预防作用,为进一步开发和利用发酵竹笋作为胃肠(GI)功能性食品提供支持。
将栽培的嗜酸乳杆菌(1.1854)和嗜热链球菌(1.1855;均为中国通用微生物培养物收集中心,中国北京)以3,000× g离心10分钟,之后弃去上清液,用中等量的盐水洗涤,并且悬浮于盐水中以将细菌液体的浓度调节至7.5×10 9 CFU / ml(嗜酸乳杆菌:嗜热链球菌,1:1)。随后将嗜酸乳杆菌和嗜热链球菌混合,以1:1的比例获得C. quadrangularis shoot发酵的细菌液体。新鲜将四角枫(5kg)洗涤并粉碎,随后在42℃(固定形式)下加入500ml混合的发酵细菌液体16小时用于主发酵步骤。在此之后,在4℃下进行前期发酵12小时以获得发酵的C. quadrangularis枝条。
使用研磨机粉碎新鲜的C. quadrangularis shoot(CQS)和发酵的C. quadrangularis shoot(FCQS)并用盐水洗涤10分钟三次。弃去液体,加入95%乙醇(10X)清洗残余物,随后将混合物以750× g离心5分钟。弃去上清液,压碎小块干净的固体,制备含有C. quadrangularis枝条纤维的3滴1%亚甲基染料乙醇溶液。在显微镜(Y-2A; Nikon Corp.,Tokyo,Japan)下以×20放大率观察载玻片。
巴氏杀菌后,将CQS和FCQS干燥,粉碎,然后在按压到模具中之前根据重量以1:9的比例与进料混合。然后将这些CQS和FCQS饲料添加到实验小鼠饲料中至总共10%CQS和FCQS。
7周龄雌性印迹昆明小鼠(n = 50;体重25-30g)重庆医科大学实验动物中心,重庆,中国)随机分为正常组,对照组,比沙可啶组,SCQ组和FSCQ组( N = 10 /组)。将小鼠维持在温控设施(温度23±1℃,相对湿度50±5%)中,具有12小时光/暗循环。在实验期间,正常组中的小鼠未接受治疗。对照组小鼠在最初6天内未接受治疗; 然而,在此之后,他们每天一次灌洗给予活性炭水,持续3天。在比沙可啶治疗组中的小鼠每天一次施用比沙可啶(100mg / kg体重),并且在6天后通过每天一次不含比松啶酮的情况灌洗活性碳水3天。随意访问Feed。SCQ和FSCQ组的小鼠分别给予含有10%SCQ和FSCQ的饲料,并随意进食在整个实验期间获得水,并且在最后3天期间通过灌洗施用活性碳水。所有组在9天后限制食用食物24小时,并通过灌洗施用浓度为0.1ml / 10g的10%活性炭冰水。每组分为两个小组。观察每组中的5只小鼠确定它们排出第一次黑便排便的时间点,而其余5只小鼠在活性炭水灌洗后30分钟通过颈椎脱位实施安乐死,以观察活性炭中的胃肠道转运。小肠。胃肠道转运计算如下:GI(%)=小肠中活性炭的行进距离/小肠的总长度×100%(13)。这些实验遵循重庆医科大学动物伦理委员会(中国重庆)批准的方案。
将小鼠血液(0.1ml)以3,000× g离心10分钟。含有小鼠血清的上清液用于测定胃动素(MTL),内皮素-1(ET-1),血管活性肠肽(VIP)和乙酰胆碱酶(AchE)的指数,这些指标是根据制造商测量的。 MTL,ET-1,VIP(Cusabio Biotech Co.,Ltd.,Wuhan,China)ELISA试剂盒和AchE试剂盒(南京建成生物工程研究所,中国江苏南京)中概述的方案。
使用颈椎脱位法处死大鼠。解剖后,将小肠置于10%福尔马林溶液中24小时,并在二甲苯处理前将95%乙醇脱水。将透明块包埋在熔化的石蜡中,通过切片机切片并用苏木精伊红染色,并在Nikon Y-2A显微镜下以×10放大率观察(14)。
使用来自每组小肠的RNAzol(Invitrogen; Thermo Fisher Scientific,Inc.,Carlsbad,CA,USA)试剂从小肠中提取总RNA(2μg)。将RNA浓度调节至1μg/μl。将2μlRNA提取物分别加入1μloligoodT18,RNase,dNTP和MLV酶,5X缓冲液(GE Healthcare Life Sciences,Chalfont,UK)中,10μl用于在37℃条件下合成cDNA 120分钟。 ,99℃4分钟,4℃3分钟。表达c-Kit,干细胞因子(SCF),胶质细胞源性神经营养因子(GDNF),瞬时受体电位阳离子通道亚家族V成员1(TRPV1)和一氧化氮合酶(NOS; Tiangen Biotech Co.,Ltd.,通过RT-PCR扩增中国北京,并与GAPDH基因表达(Tiangen Biotech Co.,Ltd。)进行比较。将cDNA(2μl)与1μl每种引物(10μM)和16μl不含DNA酶的水在PCR预混合管(AccuPower PCR PreMix; Bioneer Corporation,Daejeon,Korea)中混合,并在自动热循环仪中进行PCR。 (T100,Bio-Rad,Hercules,CA,USA)进行40个循环,94℃5分钟,58℃30秒,72℃90秒,然后在95℃循环10分钟。引物如下:正向:5'-AGA CCG AAC GCA ACT T-3'和反向,5'-GGT GCC ATC CAC TTC A-3'用于c-Kit; 前进,5'-AAA CTG GTG GCG AAT C-3'; 用于SCF的反向,5'-CAC GGG TAG CAA GAA C-3'); 前进,5'-TTT TAT TCA AGC CAC CAT C-3'; 反向,5'-AGC CCA AAC CCA AGT CA-3'用于GDNF; 正向,5'-AGC GAG TTC AAA GAC CCA GA-3'和反向,5'-TTC TCC ACC AAG AGG GTC AC-3'用于TRPV1; 和转发,5'-CCA CAT CTG GCA GGA TGA GAA-3'和反向,NOS的5'-AGG CAC AGA ACT GAG GGT ACA-3'(天国生物科技有限公司,中国北京); 用于GAPDH基因表达的5'-CGG AGT CAA CGG ATT TGG TC-3'和反向5'-AGC CTT CTC GGT CGT GA-3'(Tiangen Biotech Co.,Ltd。)。随后,使用1X Tris-乙酸盐-EDTA中的2%琼脂糖凝胶通过PCR评估基因扩增(15)。
用RIPA裂解液提取组织蛋白后,用冰冷的放射免疫沉淀法(RIPA; Easybio,Beijing,China)缓冲液在冰冷的PBS中匀浆各组的总蛋白浓度,然后以13,000× g离心提取物。在4°C下保持30分钟。使用紫外分光光度计测定蛋白质(30μg),并将浓度调节至相同水平。通过10-12%SDS-PAGE(Schleicher和Schuell,Keene,NH,USA)分离蛋白质样品4小时,并转移到硝酸纤维素膜上。将膜在密封液中密封3小时,用Tris缓冲的saine(TBS; Easybio,Beijing,China)洗涤3次,并与针对c-Kit的一抗孵育(cat no.ab62154,Abcam,Cambridge,MA,USA)。 ,SCF(目录号ab83866; Abcam),TRPV1(目录号ACC-030,Alomone;中国北京),GDNF(目录号ab18956; Abcam),NOS(目录号sc-49058; Santa Cruz Biotechnology, Inc.,Dallas,TX,USA)和β-肌动蛋白(目录号ab8226; Abcam),持续2小时。用含有0.05%吐温20的PBS(PBS-T)洗涤后,印迹然后与辣根过氧化物酶缀合的山羊抗兔IgG二抗(Cell Signaling Technology,Inc。)在室温下孵育1小时。用TBS洗涤3次后,在光敏X-板(目录号BE6031,Easybio,北京,中国)上用超灵敏光液处理,开发并固定硝酸纤维素滤膜(16)。以β-肌动蛋白为参照基因,测定c-Kit,SCF,TRPV1,GDNF和NOS的蛋白表达水平。
实验数据表示为平均值±标准偏差。使用Duncan的多范围检验,通过单因素方差分析评估各组平均值之间的差异。P <0.05被认为表示统计学上显着的差异。SAS 9.2(SAS Institute Inc.,Cary,NC,USA,2009)用于统计分析。
如图1所示,FCQS中的纤维间隙增加,结构变得更加松弛,而CQS的纤维间隙更加密集和紧密。
在用活性炭处理后,对照小鼠中第一次黑便排便的持续时间最长(192分钟),而正常小鼠则为85分钟(图2)。用比沙可啶(一种抗便秘药物)治疗,使治疗和第一次黑便排便之间的持续时间缩短至99分钟。值得注意的是,FCQS喂养的小鼠(117分钟)显示出比CQS喂养的小鼠(148分钟; P <0.05)和对照小鼠(P <0.01)显着更短的时间; 然而,FCQS喂养的小鼠表现出的持续时间比比沙可啶处理的小鼠和正常小鼠长。
诱发便秘后,不同组小鼠的排便状况发生改变。排便计数在正常小鼠中最高,而对照组小鼠表现出最低的排便计数(图3)。FCQS组的排便次数高于CQS组,但仍低于比沙可啶组。对照小鼠的粪便非常干燥,CQS处理的小鼠也表现出干燥的粪便。正常,比沙可啶和FCQS组中的小鼠表现出正常的湿粪便。
在实验的最后一天,通过灌洗用活性炭处理所有小鼠。在处理后30分钟,所有活性炭都能够在正常小鼠中通过小肠,并将其设定为100%(图4 ; 表I)。活性炭在对照小鼠中难以通过小肠。对照小鼠的GI转运值为37.9%。比沙可啶处理的小鼠表现出高的GI转运值,为88.3%。与对照小鼠相比,FCQS和CQS处理的小鼠也表现出增加的GI转运,并且与CQS相比,FCQS处理的小鼠(73.8%)表现出增加的GI转运(61.7%; P <0.01)。
变量 | 正常 | 控制 | 比沙可啶 | CQS | FCQS |
---|---|---|---|---|---|
小肠长度(cm) | 48.3±2.2 a | 47.8±3.2 a | 47.9±1.9 a | 47.5±2.5 a | 47.7±2.6 a |
行走距离(cm) | 48.3±2.2 a | 18.1±3.9 e | 42.3±2.1 b | 29.3±2.2 d | 35.2±1.8 c |
GI过境(%) | 100.0±0.0 a | 37.9±5.3 e | 88.3±3.1 b | 61.7±4.0 d | 73.8±3.3 c |
在正常小鼠中,小肠绒毛是有序的,小肠壁的厚度是均匀的(图5)。对照小鼠的绒毛受损并破裂,小肠壁的厚度不均匀。比沙可啶处理的小鼠的小肠绒毛表现出最小的损伤,并且CQS和FCQS处理的小鼠的绒毛表现出比比沙可啶处理的小鼠更严重的损伤。CQS处理的小鼠表现出比FCQS处理的小鼠更严重的肠绒毛损伤。
血清中的MTL,ET-1,VIP和AchE水平在正常小鼠中最高(表II),而对照小鼠中的水平最低(P <0.05)。来自比沙可啶处理的小鼠的血清水平与正常小鼠中的血清水平相似,并且高于CQS和FCQS喂养的小鼠。值得注意的是,与对照小鼠相比,各自的FCQS和CQS处理增加了这些水平(P <0.05),并且与CQS喂养的小鼠相比,发酵进一步增加了MTL,ET-1,VIP和AchE的水平。
等级(pg / ml) | 正常 | 控制 | 比沙可啶 | CQS | FCQS |
---|---|---|---|---|---|
MTL | 189.3±23.6 a | 89.3±10.7 e | 162.4±17.9 b | 125.2±14.6 d | 149.8±15.2 c |
ET-1 | 20.1±1.1 a | 8.2±0.9 e | 18.2±0.5 b | 11.0±0.7 d | 15.2±0.8 c |
要人 | 61.2±4.2 a | 26.7±2.8 e | 51.2±1.9 b | 38.9±2.7 d | 44.3±1.3 c |
疼痛 | 37.8±1.5 a | 13.5±0.4 e | 30.6±0.8 b | 19.3±1.2 天 | 26.4±1.1 c |
通过RT-PCR和蛋白质印迹测定小鼠小肠中的c-Kit和SCF表达水平(图6)。c-Kit和SCF mRNA和蛋白表达水平在正常小鼠中最高,而对照小鼠表现出最低水平的c-Kit和SCF。除正常组外,比沙可啶处理的小鼠的表达水平高于所有其他组。与对照(P <0.01)和CQS处理的小鼠相比,FCQS处理的小鼠表现出增加的表达水平(P <0.05)。
TRPV1,GDNF和NOS是肠神经相关基因(16)。与对照小鼠(P <0.01)和CQS处理的小鼠(P <0.05; 图7)相比,FCQS能够增加GDNF mRNA和蛋白质水平,并降低TRPV1和NOS水平。FCQS处理的小鼠中的TRPV1,GDNF和NOS mRNA和蛋白质表达水平与正常和比沙可啶处理的小鼠表现的相似。
便秘可以破坏肠壁,包括绒毛的缩短和骨折,影响正常的吸收和排便(11)。结果,便秘对肠道有显着影响。先前已经证明,FCQS增加的纤维间隙有助于改善水向纤维的渗透,并增加其吸收能力和持水能力,从而增加刺激肠道蠕动的排泄物体积(17)。此外,排泄物中含水量的增加可以防止干燥的排泄物,从而增加排便(18)。以往的研究表明,发酵可以显着提高竹子的持水能力(10),这在本研究中得到证实。因此,发酵对FCQS纤维的影响可能促进排便,有效缓解便秘。
便秘患者排便困难,其频率低于GI功能和转运正常的患者。可以使用小鼠便秘模型来模拟人类便秘,并且将小鼠在便秘状态下排出由活性炭产生的黑色排泄物多长时间用作测量便秘程度的标准(17)。本研究的结果表明,FCQS组治疗与第一次黑便排便之间的持续时间明显短于CQS组,表明FCQS可能更有效地促进肠道健康和对抗便秘。
便秘最具代表性的特征是由于缺水而导致排便困难和干燥颗粒困难(7)。在本研究中观察实验小鼠的排泄物表明,在活性炭诱导的便秘后,对照组通过的粪便量显着减少,而比沙可啶,CQS和FCQS的效果优于正常方竹。这些发现表明,CQS是一种适用于缓解便秘的有效食品,发酵可以提高其疗效。
行进距离和活性炭的胃肠道转运时间是衡量肠功能的关键指标,它影响便秘的程度。距离和胃肠道转运时间增加表明便秘程度较低(19)。本研究中使用的小鼠便秘模型表明,正常组和对照组的肠活动变化,活性炭的胃肠道通过时间差异显着。CQS能够显着缓解便秘,显着改善肠道中活性炭的胃肠道转运时间。值得注意的是,与CQS相比,FCQS对缓解便秘具有优异的效果。此外,本研究的结果表明,FCQS对便秘的影响与比沙可啶相似,后者被证明优于新鲜CQS的作用。
MTL是一种胃肠激素,可刺激胃蛋白酶的分泌,促进肠道蠕动,这是正常生理性肠道活动和排便所必需的(20)。内皮素可确保血管紧张,维持正常的心血管系统,避免便秘引起的其他疾病(心血管疾病,高血压)(21)。ET-1是调节心血管功能,促进血管正常收缩和扩张,缓解便秘引起的血管异常收缩的关键因素(22)。VIP可以放松平滑肌,促进血管扩张,增加肠道分泌物的产生,刺激肠道蠕动。之前的一项研究表明,VIP分泌的减少可能直接导致便秘(23)。AchE调节肠道收缩,促进粘液分泌,并通过增强肠道收缩和粘液分泌来促进排便,这可能有助于避免便秘(24)。已经证实,小鼠血清中MTL,ET-1,VIP和AchE的水平随着便秘程度而降低(19)。在本研究中,与对照组相比,FCQS能够显着提高MTL,ET-1,VIP和AchE的水平,并且效果大于新鲜CQS组。
先前的一项研究表明,c-Kit在小鼠肠道的平滑肌中表达; 因此,阻断c-Kit的功能可能导致严重的肠功能障碍和肠梗阻。c-Kit和SCF是相互依赖的,因此它们能够相互促进,因此肠道中c-Kit和SCF表达水平的任何下降都可能导致便秘(25)。
与其配体结合后,TRPV1打开细胞传代并释放大量神经肽,兴奋性氨基酸和胃肠肽,导致肠道敏感性增加和运动障碍,导致便秘(26)。GDNF调节神经细胞的生长和发育,确保受损神经的保护和修复。外源性GDNF显着改善肠道功能,缓解便秘(27)。NOS在肠道中具有重要作用。例如,NOS和AchE维持肠运动的平衡。NOS抑制AchE的释放,NOS和VIP表现出与便秘直接相关的紧密形态关系。过量的NOS可能导致便秘和减少对肠道有益的其他因素(28)。
本研究的目的是研究C. quadrangularis shoot是否具有预防活性炭引起的便秘的作用以及发酵是否能够增加小鼠的这种效果。与CQS相比,FCQS具有更高的纤维质量。与比沙可啶处理的和正常小鼠相比,FCQS喂养的小鼠在治疗和第一次黑便排便之间表现出增加的持续时间; 然而,FCQS喂养的小鼠表现出比CQS喂养和对照小鼠更短的持续时间。FCQS喂养的小鼠的沮丧状态也类似于比沙可啶处理的和正常的小鼠。与CQS喂养和对照小鼠相比,FCQS喂养的小鼠的GI转运时间增加; 然而,FCQS喂养的小鼠表现出与通过比沙可啶处理的正常小鼠相似的GI转运时间。
在对照小鼠中检测到许多小肠损伤。尽管CQS能够减少这些损伤,但是通过形态学观察确定FCQS表现出优于CQS的恢复。与CQS喂养和对照小鼠相比,FCQS喂养的小鼠的血清MTL,ET-1,VIP和AchE水平增加。与CQS喂养和对照小鼠相比,FCQS喂养的小鼠在小肠中表现出c-Kit,SCF和GDNF的mRNA表达水平增加; 而与喂食CQS的小鼠和对照小鼠相比,喂食FCQS的小鼠的小肠中的TRPV1和NOS表达水平降低。
总之,这些发现表明,与CQS相比,FCQS对活性炭诱导的小鼠便秘具有更好的预防作用。需要进一步研究以充分阐明FCQS作为治疗便秘的治疗策略的保护作用和剂量要求。