发布日期:2018-11-07 11:33 来源:活性炭网 作者:活性炭网 浏览数:
抽象 寻找能够杀死复制和非复制性 结核分枝杆菌的药物 面临着实际的瓶颈。 在化合物,供应,劳动力和时间方面,CFU的测量和抑菌杀菌活性的鉴别是昂贵的。 在阻止 结核分枝杆菌
大多数抗生素是通过鉴定具有抗复制(R)细菌活性的化合物而发现的(1)。这一模式是变化的,作为治疗持续性细菌感染,如结核病(TB),可以从非复制的(NR),其在表型上耐受针对复制细菌活性的抗生素的细菌的数量的其他定位受益(2,3)。最近的研究已经开始着手解决这一需求,通过基于目标和全细胞筛选,以确定该化合物杀死结核杆菌阻止其复制的条件下(4,- 11)。
表型耐受性导致细菌持久性,即在暴露于药物期间某些细菌的存活,在标准条件下具有相同基因组序列的细菌被杀死。表型耐受性和持久性的多种机制大致分为I类和II类(3)。I类持久性是稀有细胞,否则复制细菌群体。他们的表型公差是本征的,并且可以或可以不与非复制状态之前抗生素曝光(相关联12,- 14)。相比之下,II类宿主是暴露于外在压力的群体中的大多数,这种压力阻止它们复制。宿主免疫力可以产生几种这样的压力 出于这个原因,而免疫有助于控制结核分枝杆菌,免疫可以在同一时间,挫败的药物,以消除它的能力(15,- 17)。
为了鉴定靶向结核分枝杆菌 II类分子的分子,我们使用非复制条件进行筛选活动,该条件旨在模拟结核分枝杆菌在宿主的一个或多个微环境中遇到的四种生理应激:酸度,活性氮中间体,缺氧,和脂肪酸作为碳源(6,16,18,- 26)。检测杀死非复制细菌对高通量测定提出了挑战,其中读数基于去除化合物后在复制条件下不能恢复生长。洗涤细胞以去除细胞外和膜相关的抗生素需要多个步骤离心细菌培养物并重悬细菌沉淀。这在分子的高通量测试中不是可行的选择。相反,我们在筛选试验中添加了一个阶段,其中将非复制条件下的培养物的等分试样稀释到复制条件中以允许存活细胞的生长(6))。为方便这种方法而付出的代价是假阳性率,当有效分子仅在复制条件下活化时,由于它们从非复制阶段到生长阶段的遗留而在非复制条件下登记为活跃候选者。的MIC在复制与那些在两级非复制的测定条件进行比较可以提供一个化合物是否很可能是针对复制选择性活性的结核分枝杆菌,针对非复制选择性活性的结核分枝杆菌,或活性对两种(选择性复制活性,选择性地非复制活性和双活性化合物(图1))。然而,到目前为止,明确的区别需要经典的基于CFU的测定,其将化合物稀释至消光。在CFU技术中,来自每个重复的具有不同浓度的化合物的等分试样本身被连续稀释,然后从后面的稀释液中取出的小等分试样在更大体积的琼脂上铺展。
高通量筛选了采用非复制阶段,随后幸存者的复制生长,已经确定了数以千计的候选非复制活性分子和许多候选双活性分子(的6,26,27)。基于CFU的读数对这些筛选命中的表征在劳动力,时间和成本方面存在瓶颈(图1))。为了解决这个问题,我们试图将标准MIC肉汤稀释试验与新试验相结合,该试验比确定每种化合物浓度下剩余的CFU更快,允许以重复的大量浓度测试化合物,提供了值与最小杀菌浓度(MBC)相似,即杀死99%细胞的浓度(MBC 99))通过固体细菌学琼脂上CFU的减少确定,消除了CFU分析中涉及的每个测试浓度的样品的连续稀释,降低了化合物进入生长期后的活性,准确地表明化合物是否是选择性复制活性,选择性非复制活性或双活性,并鉴定化合物在测试条件下是杀菌还是抑菌。这里描述的木炭琼脂刃天青酸测定(CARA)满足那些标准。
所有实验均用野生型进行结核分枝杆菌 H37Rv的菌株和耻垢分枝杆菌 MC 2级155 结核分枝杆菌从ATCC(PA-824实验)获得的菌株或从北R.(特鲁多研究所萨拉纳克,NY)(所有其他实验)。结核分枝杆菌在Middlebrook 7H9-白蛋白 - 葡萄糖 - NaCl-Tyl(0.2%甘油,0.5%白蛋白,0.2%右旋糖,0.085%NaCl和0.02%泰洛沙泊)或Middlebrook 7H9-油酸 - 白蛋白 - 葡萄糖 - 过氧化氢酶中传代(OADC)-Tyl(0.2%甘油,油酸,白蛋白,葡萄糖,过氧化氢酶)并在5%CO 2和20%O 2的固体7H11-OADC上接种。在复制和非复制的高通量筛选方法如先前所述(6,28)。所述非复制条件由经修饰的Sauton的基于介质混合物的(每升为0.5g KH 2 PO 4,0.5g的硫酸镁4 0.05g的柠檬酸铁铵,0.5%牛血清白蛋白(BSA),0.085%氯化钠和0.02%泰洛沙泊)在用0.5mM的NaNO pH 5.0的2代替右旋糖,0.05%丁酸酯,并在1%氧气孵育2和5%CO 2。结核分枝杆菌在对数中期,在含有0.02%泰洛沙泊的Dulbecco's磷酸盐缓冲盐水(PBS)中洗涤两次,然后重新悬浮于非复制培养基中,光密度为580nm(OD 580)为0.1,用于MIC和高通量筛选(HTS) )测定。对于所有MIC测定,复制结核分枝杆菌使用OD580为0.01。单细胞悬浮液用于基于CFU-测定法和制备通过使用10分钟离心123×去除结块杆菌克无制动。
用另外的活性炭(0.4%,wt / vol)制备含有10%OADC补充物的7H11 Middlebrook琼脂。在含有大磁力搅拌棒的2升Erlenmeyer烧瓶中,将活性炭用1升7H11琼脂高压灭菌。将装有烧瓶的高压釜托盘装入1至2英寸水,以防止培养基沸腾出锥形瓶。高压灭菌后,将介质在缓慢搅拌下冷却至55℃。在培养基冷却至触摸后加入OADC补充剂。将含有培养基的2升锥形瓶保持在55至60℃的磁力搅拌板上,以最慢的速度(1至1.5,使用VWR热板搅拌器)将木炭保持在悬浮液中并防止颗粒沉降。使用Rainin 12通道多管移液器将200微升7H11-OADC-木炭加入到96孔Corning微孔板孔中。注意避免在孔之间滴下液体琼脂,因为琼脂可以在孵育时支持霉菌的生长。提示经常更改,因为介质迅速固化并阻塞提示。固化后,将琼脂平板置于大的Ziploc袋中以防止干燥并在4℃下储存。使用前,将平板平衡至室温(RT)并干燥它们的盖子以除去冷凝。过度干燥的CARA平板可能会立即吸收刃天青(7-羟基-3)提示经常更改,因为介质迅速固化并阻塞提示。固化后,将琼脂平板置于大的Ziploc袋中以防止干燥并在4℃下储存。使用前,将平板平衡至室温(RT)并干燥它们的盖子以除去冷凝。过度干燥的CARA平板可能会立即吸收刃天青(7-羟基-3)提示经常更改,因为介质迅速固化并阻塞提示。固化后,将琼脂平板置于大的Ziploc袋中以防止干燥并在4℃下储存。使用前,将平板平衡至室温(RT)并干燥它们的盖子以除去冷凝。过度干燥的CARA平板可能会立即吸收刃天青(7-羟基-3)H-苯并恶嗪-3-酮-10-氧化物)溶液,导致变化或不能确定荧光单位。
图2显示了一个概述。结核分枝杆菌的单细胞悬液在含有200μl特异于复制或非复制条件的液体培养基的96孔微量培养板中暴露于测试试剂或二甲基亚砜(DMSO)媒介物对照7天。DMSO保持在1%终浓度。将化合物稀释液置于第3至11列中,并且载体对照在第2列中。第1列和第12列不含测试试剂,但填充有200μl无菌Dulbecco's PBS以使内部孔的蒸发最小化。使用A至H行。制备剂量 - 反应测定,每个浓度重复3次。结果表示为平均荧光±标准偏差(SD)。在第7天,将细胞与设置为40μl的P200多通道移液管混合(向上和向下移液10次,同时以圆周运动搅拌以确保孔底部边缘上的细胞混合); 然后,使用P20多通道移液管,将10μl点在7H11-OADC-木炭琼脂平板(CARA微量培养板)的表面上。在测试孔转移到CARA微孔板进行生长的同一天,11个2倍稀释的野生型单细胞悬浮液从OD 580为0.1 开始的结核分枝杆菌培养物在来自孔1至11的CARA微量培养板中以8个重复点样。该板用作标准曲线。将接种的微孔板堆叠,置于Ziploc袋中,拉链开裂,并在37℃,20%O 2和5%CO 2下孵育7天。在第7天,人们可以观察到在对照孔中生长的大量微菌落。将40微升1:1的alamarBlue(AB)储备溶液和10%聚乙烯山梨糖醇酯(吐温80 [TW80],10%体积/体积的双蒸水[ddH 2 O])溶液直接加入到表面微孔板和结核分枝杆菌微菌落增长。显影剂为AB-TW80。如果CARA板在37℃温育期间变得干燥,则建议在加入AB-TW80显影液之前用40μl7H9-OADC预先润湿所有孔。该技术可以帮助防止CARA显影剂吸收到琼脂中。
将板缓慢地来回摇动以确保AB-TW80混合物涂覆在孔的表面上。将板再次装袋并在37℃下孵育1小时。如果结核分枝杆菌将菌落团块漂浮到液体表面,轻轻地将其向下推,以确保它被AB-TW80溶液润湿。在添加AB-TW80后1小时,将CARA微量培养板置于生物安全罩中,并移除盖子15分钟以进行温度平衡,这对于避免会影响荧光读数的盖子或贴纸上的冷凝物积聚是至关重要的。将光学质量PCR贴纸(Denville)放置在板的表面上并使用Kimwipe压在板上以形成紧密密封。通过顶部读数确定荧光,激发波长为530nm,发射波长为590nm(SpectraMax M5; Molecular Devices)。刃天青粉是商业alamarBlue的较便宜的替代品,可用于制备CARA显影液:0.01%刃天青(wt / vol)在无菌Dulbecco'中
所述耻垢分枝杆菌 CARA是相同于结核分枝杆菌 CARA,但有以下不同之处:与7H11琼脂而不OADC补充剂制备微孔板CARA,药物暴露的长度为24个小时; CARA平板上细菌回收的时间为24或48 h; 将吐温80溶于Dulbecco's PBS(氯化钙和不含氯化镁; Gibco)代替水。
除非另有说明,否则所有化学品均来自Sigma,具有最大纯度。我们非常感谢H. Boshoff和TB联盟分别提供TMC207和PA-824。
将测试试剂从DMSO原料添加到含有或不含0.5%BSA或0.4%活性炭(wt / vol)的Dulbecco's PBS(氯化钙和不含氯化镁; Gibco)中。在室温下20分钟后,使样品通过10-kDa分子量(MW)截止滤器(Amicon)以除去残留的炭 - 和BSA-药物复合物。通过液相色谱 - 质谱(LC-MS)分析流出物的任何未结合的药物。为了解决在稍后时间点与木炭的结合,在含有或不含有0.4%活性炭(wt / vol)的PBS中含有化合物的微孔板在室温下温育18-24小时。然后将微孔板离心以沉淀木炭,并通过LC-MS分析上清液。
使用Collaborative Drug Discovery(Burlingame,CA)对数据进行存档和分析(29)。当有明显的结核分枝杆菌时在DMSO对照孔或其中化合物无活性的孔中生长,我们观察到最大荧光的显着变化(有时> 2倍)。在这种情况下,通过增加实验重复的数量并将数据绘制为平均值±标准误差,可以更容易地观察趋势。使用“对数抑制剂与响应 - 可变斜率(4个参数)”的分析参数,在Prism 6 for Mac OS X中生成抑制剂与荧光图的曲线拟合图(显示为红线),以帮助说明荧光趋势。鉴于DMSO处理值的变化,包括具有高荧光值的孔中的漂白,50%抑制浓度(IC 50由于与对照相比难以将数据标准化为抑制百分比,因此未计算s)。如何确定CARAMBC≥99的实例如图S5中的补充材料所示,如何确定小分子的无活性,杀菌或抑菌活性的实例如图S6所示在补充材料中并总结在表1中。JChem附加组件(ChemAxon)与Microsoft Excel一起用于使用数据可视化结构。
分析类型 | 参数 | 例A | 例B | 例C | 例D | 例E | 例F | 例G | 例H | 例一 |
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图2中的示例 | 1,2 | 3 | 4 | 4 | 五 | 6 | 五 | 6 | 7 | |
非复制试验 | 待用 | 待用 | 待用 | 待用 | 杀灭 | 杀灭 | 强大的cidal | 强大的cidal | 杀灭 | |
复制试验 | 杀灭 | 静态+无PAEb | 静态+弱PAE | 静态+强效PAE | 杀灭 | 静态(±PAE) | 杀灭 | 静态(±PAE) | 待用 | |
活动分类 | R-杀灭 | R-静 | R-静 | R-静 | 双主动 | 双主动 | 双主动 | 双主动 | NR-活跃 | |
MIC 90 s的比率c:R / NR | <0.2 | <0.2 | <0.2 | <0.2 | 0.2-5 | 0.2-5 | > 5 | > 5 | > 5 | |
CARA:非复制 | 没有荧光减少 | 是 | 是 | 是 | 是 | |||||
剂量依赖性降低至MIC90的背景 | 也许 | 也许 | 是 | 是 | 是 | |||||
剂量依赖性降低至背景≥4×MIC 90 | 也许 | 也许 | 也许 | |||||||
CARA:复制 | 静态窗口 | 是 | 是 | 也许 | 是 | 是 | ||||
没有荧光减少 | 是 | 也许 | 也许 | 是 | ||||||
剂量依赖性降低至MIC90的背景 | 是 | 也许 | 是 | 也许 | 是 | 也许 | ||||
剂量依赖性降低至背景≥4×MIC 90 | 是 | 也许 | 也许 | 也许 | ||||||
展开轴以查看SW? | 是 | 也许 | 也许 | |||||||
替代解释 | 木炭可能无法有效地结合药物 | 木炭可能无法有效地结合药物 | 木炭可能无法有效地结合药物 | 木炭可能无法有效地结合药物 |
我们用于筛选针对结核分枝杆菌的化合物的复制和非复制条件在接种物(OD 580为0.01对比0.1),气相(20%O 2对1%O 2,各自含有5%CO 2),基础培养基( Middlebrook 7H9与Sauton's)和暴露于化合物的持续时间(复制试验中7天与原始浓度的非复制试验中3天,然后在1:5稀释到生长条件后7天后)(6,28)。然而,我们可以从两个条件下的MIC 90值的比率推断出(R-MIC 90 / NR-MIC 90)化合物是否可能具有选择性复制活性或非复制活性(图1)。在复制和非复制测定的384孔格式中,对于R-MIC 90 / NR-MIC 90 <0.2,该化合物可能是选择性复制活性的; 如果R-MIC 90 / NR-MIC 90在0.2和5之间,则该化合物具有双重活性; 如果是R-MIC 90 / NR-MIC 90如果> 5,该化合物可能是选择性非复制活性或双活性的,具有比复制活性更强的非复制活性。这些预测比率对于96孔,2板测定形式是不同的,其允许21倍稀释到生长条件(R / NR):<0.05,复制活性; 0.05到21,候选对偶; > 21,非复制活性或双活性,具有更强效的非复制活性。
一些化合物,如莫西沙星和利福平,基于〜0.25到0.5的比例混淆了双重活性的预测。基于7天CFU的分析显示,它们仅在浓度分别为25和50μM的多重非复制条件下发挥杀菌活性,远远高于其R-MIC 90(≤0.16μM),即便如此,杀戮相对温和:1.5至3 log 10 CFU(26)。我们推测莫西沙星和利福平在非复制性筛选试验中的表观活性可能反映了药物从非复制期到生长期的遗留。
这些观察结果促使我们测试了将活性炭包含在液体培养基和固体细菌琼脂中的影响,首先是未处理的结核分枝杆菌作为对照,然后是在复制条件下暴露于药物的结核分枝杆菌。最后,我们比较了复制和非复制条件下13种抗分枝杆菌化合物(包括结核病药物)的MICs和CARAs的结果。
在我们的多重非复制试验(6)的单板,384孔格式中,化合物以其原始筛选浓度的20%转移到非复制试验的复制生长期(图1)。)。如上所述,有效的复制活性化合物可通过在测定的生长期杀死而记录为潜在的非复制活性化合物。为了减少这种假阳性结果,我们补充了含有0.4%(wt / vol)活性炭的液体7H9-甘油细菌培养基。需要不断搅拌以使木炭粉末保持悬浮状态。此外,活性炭使7H9培养基脱色(参见补充材料中的图S1a),表明它结合了小分子成分,木炭淬灭了刃天青的荧光(参见补充材料中的图S1b),其还原为试卤灵。是相对的分枝杆菌的数字(的有用的定量反射30,31)。为了避免这些问题,我们使用基于琼脂平板的方法来代替基于液体的生长(图2)。活性炭是细菌琼脂中的常见补充剂,其中它仍保持均匀悬浮。向7H11-OADC琼脂添加0.4%(wt / vol)活性炭对结核分枝杆菌 CFU 的数量或其出现时间没有可检测的影响,尽管菌落通常略小(参见图S1c和d)。补充材料)。当未处理的结核分枝杆菌从复制条件中取出并分配到木炭琼脂上时,在第5天就可以看到小菌落。当结核分枝杆菌时来自非复制条件,在第7天到第10天可检测到微菌落。微菌落太小而不能可靠计数,并且微孔太小而不能支持统计学上有用数量的离散大孔隙。因此,为了对琼脂表面上的结核分枝杆菌生物量进行半定量,我们在CARA的每个孔中的微菌落顶部添加alamarBlue和Tween 80作为1:1混合物(体积/体积,100%alamarBlue和10%TW80)。通过顶部读数记录并记录荧光。在37℃温育1小时后,很容易检测到未处理的结核分枝杆菌产生的荧光(图2)。较长的孵育时间被吸收AB-TW80显影液的琼脂和木炭介导的荧光猝灭所混淆(参见补充材料中的图S1b)。
荧光(线性)与未处理的结核分枝杆菌杆菌(log)的起始数之间存在线性对数关系,在培养板之前发现的结核分枝杆菌杆菌的2至3log 10范围内(图3)。因此,我们可以推断CARA荧光的完全丧失表明细菌数量减少≥99%。由于提供2 log 10杀灭结核分枝杆菌的最低浓度通常定义了抗生素的最低杀菌浓度(MBC 99)),我们推断在CARA中,产生高于背景的荧光的最低药物浓度可以作为MBC的替代物(参见补充材料中的图S5)。这种浓度在此称为“CARA- MBC≥99。”
最初接种的结核分枝杆菌杆菌的实际数量在2至3 log 10动态范围内产生信号,并且范围是否超过2 log 10或3 log 10取决于允许结核分枝杆菌在CARA上生长多长时间加入刃天青的前板(图3a至TOD)d),以及在较小的程度上,对细胞进行多久用刃天青孵育记录荧光之前。结核分枝杆菌 10天的生长与7天的生长相比,在CARA平板上增加了灵敏度和动态范围。然而,我们使用了7天的孵化,因为它更快,其灵敏度足够。
包含木炭不影响荧光强度和初始细菌数之间的相对关系,如图3所示,用于比较CARA平板与正常琼脂刃天青酸测定(NARA)平板。然而,包含木炭确实降低了所获得的最大荧光强度,并且在更高的荧光强度下增加了重复的标准偏差(图3)。
对于快速生长的耻垢分枝杆菌(参见补充材料中的图S2)获得了类似的结果,对方案进行了微小调整。我们推断耻垢分枝杆菌的倍增时间更快(3小时与结核分枝杆菌相比,约18至24小时)需要更短的CARA孵育时间。在用AB-Tw80发育之前孵育24小时(参见补充材料中的图S2a)或48小时(参见补充材料中的图S2b)显示,类似于结核分枝杆菌的CARA,用于M的CARA .smegmatis有一个2到3 log 10 CFU的窗口。虽然48小时CARA孵育提供了比24小时CARA孵育更大的动态范围耻垢分枝杆菌,我们常规使用24小时CARA孵育来减少总体测定时间。对于非复制性耻垢分枝杆菌测定,我们决定在24或48小时基于DSMO处理的对照孔中是否存在可见生长来开发CARA板。
基于以下结果以及从学术和工业合作中测试100多种复制,非复制或双活性化合物所获得的结果,我们制定了解释CARA数据的指南(表1和图2 ;另见补充材料中的图S5和S6)。为了清楚起见,我们在完成CARA验证的描述之前,在此提供指南。为了说明解释性概念,将参考稍后将在其特定结果的背景下再次讨论的图。
虽然将药物分类为复制和/或非复制活性化合物通常很简单(图2),但对于某些药物,复制活性化合物的进一步分类为抑菌或杀菌需要仔细分析CARA结果。根据定义,所有抑菌药物都会消除细菌复制。然而,对于药物保持分类为抑菌的细菌杀灭量没有标准化的定义,并且进一步CFU减少将分类改变为杀菌的点。对金黄色葡萄球菌等快速生长的细菌有活性的药物如果在24小时内降低CFU <99.9%则具有抑菌作用(32而对于缓慢生长的分枝杆菌有活性的药物通常被认为是抑菌剂,如果它们在15天内导致<99%的CFU减少(33)。这种抑菌 - 杀菌的区别是任意的,取决于药物暴露的时间,细菌菌株和种类,药物暴露期间使用的液体培养基的类型,以及用于回收的琼脂培养基的类型(33)。下面,我们说明用于CFU数据(CFU减少99%和99.9%图7N,,8H,8H,和and9a,图9a,,C,C ^,并和e)。Ë)。为了速度,我们选择将CARA中的复制药物暴露限制在7天而不是15天。对于非复制条件,7天药物暴露也是必要的,其中我们观察到7天后未处理的结核分枝杆菌杆菌CFU减少(26)。
我们预计CARA- MBC≥99与标准液体培养液MIC 90的直接比较可能会区分抑菌和杀菌化合物(图2)。因为液体培养液MIC 90剂量响应曲线通常在生物学重复之间具有2倍的变化,所以MIC 90的显着差异通常被认为是> 4倍的那些。因此,当在液体培养液MIC 90下测试浓度≥4倍时,如果测试剂未能将CARA中的荧光降低至背景水平,则认为测试剂具有抑菌作用(图2 ;参见图S5)补充材料)。
当CARA曲线反映用于确定MIC 90的曲线时,CARA准确地预测了杀菌活性(图2 ;参见补充材料中的S6a),抑制药物的CARA结果可能难以解释(图2 ;还参见补充材料中的图S6b至d)。虽然一些化合物明显具有抑菌作用,因为相对于DMSO对照,它们对CARA荧光的影响极小(图2 ;参见补充材料中的图S6b和c),在某些情况下,CARA用于复制结核分枝杆菌未能明确区分抑菌和杀菌活性(参见补充材料中的图S6d)。这可以由表现出抗生素后效应(PAE)的抑菌化合物产生,其强烈抑制CARA平板上的菌落生长(图2),使得具有抗生素后效应的抑菌化合物产生与杀菌化合物类似的结果。
出于这些原因,我们引入了一个特定于复制测定的操作术语“静态窗口”(SW)来描述MIC 90和CARA-MBC 之间≥4倍的剂量响应变化(窗口)≥99(参见补充材料中的图S6d)。静态窗口是抑菌化合物子集的标志,例如利奈唑胺(稍后描述)。静态窗口的主要特征是2倍:CARA荧光必须以剂量依赖的方式降低到背景水平,CARA- MBC≥99比MIC 90高≥4倍。在某些情况下,只有在扩展y之后才能通过目视检查绘制的结果来辨别静态窗口轴,以确定CARA荧光升高到背景之上的药物浓度(参见补充材料中的图S5b和c)。静态窗口可预测抑菌活性; 然而,它们不排除如已经观察到的氟喹诺酮抗生素(一定的杀菌活性可能在一些药物浓度或更长药物暴露发生的可能性34,35)。
因为非复制试验是抑菌的并且与复制的生长阶段相结合以允许存活的细胞增加生物量,所以复制无活性的药物必须是非复制性的 - 杀菌的以产生NR-MIC 90(图1)。对于非复制特异性化合物,CARA荧光的减少可归因于CFU减少,并且静态窗口的概念不适用。
对于基于R-MIC 90至NR-MIC 90比率推断为候选双活性的化合物(图1),剂量依赖性NR-CARA荧光降低至背景水平表明真正的非复制 - 杀菌活性。然而,当R / NR-MIC 90比率表明化合物具有复制活性时(图1),有时NR-CARA荧光在浓度显着高于R-MIC 90且R-CARA- MBC≥99时降低。这种化合物可能是复制化合物,其NR-CARA荧光降低是由于木炭不能结合携带的化合物,对非复制细菌具有弱杀菌活性的化合物或其组合而导致的。下面针对卡那霉素描述了这种现象的一个例子。
我们首先比较了抗分枝杆菌化合物与活性炭或牛血清白蛋白级分V(BSA)的快速结合,然后测试了孵育时间对化合物与活性炭结合的影响。在第一个实验中,我们比较了0.4%活性炭(wt / vol)和0.5%BSA(wt / vol),即7H11-OADC琼脂中发现的BSA浓度。我们使用30μg/ ml和100μg/ ml的药物来模拟MIC 90高端的浓度测定,其中结转可能发挥重要作用。将化合物稀释到磷酸盐缓冲盐水(PBS)中,在室温下与含有木炭或BSA的PBS混合20分钟,然后通过10-kDa过滤器以保留木炭或BSA药物复合物。通过LC-MS定量未结合的药物(流穿液)。对于乙胺丁醇,乙硫异烟胺,fenamisal,异烟肼(INH),利奈唑胺,莫西沙星,对氨基水杨酸盐(PAS),链霉素和PA-824,<25%的化合物保留在BSA级分中。对于硝唑尼特,羟基保泰松和利福平,25%至75%的化合物保留在BSA部分中。换句话说,BSA未能快速结合> 75%的任何化合物。相比之下,20分钟后,活性炭已经去除了95%至100%的乙胺丁醇,乙硫异烟胺,fenamisal,利奈唑胺,硝唑尼特,羟基保泰松,PA-824,PAS和利福平,留下约1%至12%的莫西沙星和硝唑尼特和约55%至80%的异烟肼和链霉素未结合。当我们将孵育时间延长至18至24小时时,除乙醇丁醇(约3%未结合)和链霉素(58%未结合)外,活性炭结合所有化合物> 99.9%(表2)。
复合 | 复制MIC90(μg/ ml) | 复制NARA-MBC≥99(μg/ ml) | 复制CARA-MBC≥99(μg/ ml) | 非复制MIC90(μg/ ml) | 非复制NARA-MBC≥99(微克/毫升) | 非复制CARA-MBC≥99(微克/毫升) | 复制CARA-MBC≥99 / NARA-MBC≥99(倍数移位)a | 非复制CARA-MBC≥99 / NARA-MBC≥99(折移位)一个 | 去除0.4%(wt / vol)活性炭的百分比b |
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链霉素 | 2.5 | 2.5 | 2.5 | 5-> 10 | > 10 | > 10 | 1 | ≥2 | 41.7 |
乙胺丁醇 | 3.13-6.25 | 3.13-12.5 | 50-100 | 25-50 | 50-100 | > 100 | 8 | ≥2 | 97.2 |
PA-824 c | 0.2-0.4 | 0.78 | ≥25 | 0.4-0.78 | 0.78 | 12.5-25 | ≥32 | 16-32 | ≥99.9 |
利福平 | 0.08-0.16 | 0.16-0.31 | 0.16-0.31 | 0.31-1.25 | 0.63-1.25 | 5-10 | ≤2 | 4-16 | ≥99.9 |
莫西沙星 | 0.08-0.2 | <0.4 | <0.4 | 0.78-3.13 | 1.56-3.13 | ≥100 | ND d | ≥32 | ≥99.9 |
羟基保泰松 | > 100 | > 100 | > 100 | 3.13-12.5 | 12.5 | 12.5-25 | ND | ≤2 | ≥99.9 |
ethionamide药物 | 1.56-3.13 | 6.25-12.5 | 25 | 25 | 25 | > 100 | 2-4 | ≥4 | ≥99.9 |
异烟肼 | <0.4 | ND | ND | 12.5 | 12.5 | > 100 | ND | ≥4 | ≥99.9 |
TMC207 | 0.2 | 0.78-1.56 | 12.5-14> 25 | 1.56-3.13 | 1.56 | 12.5≥25 | ≥8 | ≥8 | ≥99.9 |
利奈唑胺 | 1.03-2.03 | NT è | 33 | 16.5 | NT | > 33 | ND | ND | ≥99.9 |
PAS | <0.4 | <0.4-1.56 | 12.5-100 | 25 | 25-50 | 50-100 | ≥32-64 | 2-4 | ≥99.9 |
Fenamisal | <0.4 | <0.4 | 100 | 0.78-1.56 | 0.78 | 100 | ≥256 | 128 | ≥99.9 |
Nitazoxanidec | 25 | 100 | 100 | 3.13 | 6.25 | 6.25 | ≤2 | ≤2 | ≥99.9 |
因此,对于每种测试的化合物,活性炭比BSA更快且更广泛地隔离药物。在许多情况下,100%的化合物在20分钟内被活性炭吸收,到24小时,活性炭几乎吸收了所有化合物> 99.9%。值得注意的例外是链霉素和乙胺丁醇(在较小程度上)。
接下来,我们测试了在琼脂中包含活性炭的影响,以允许从液体MIC 90测定中回收活的野生型复制或非复制的结核分枝杆菌(表2)。为此,我们比较了一组抗分枝杆菌化合物的NARA与CARA平板的结果。包含木炭对INH,利福平,莫西沙星,PAS,fenamisal,乙硫异烟胺,PA-824,TMC207和乙胺丁醇的表观活性有重要影响,但对羟基保泰松,硝唑尼特和链霉素影响不大(表2))用于有木炭和没有木炭的头对头比较; 相反,结果如下所示,用木炭进行重复实验。因为包含活性炭从未增加药物的表观效力并且仅降低某些药物的表观效力,其效果似乎不直接施用于结核分枝杆菌,而是具有在琼脂生长期期间抑制生长的潜力的药物。因此,作为常规,我们在微量培养板琼脂测定中包括活性炭,并使用所得的CARA来研究TB-活性剂对复制和非复制的结核分枝杆菌杆菌的影响。
在琼脂复制条件下携带PAS和fenamisal(表2)。在非复制条件(表2),在包括活性炭的影响轻微,例如不等,2至4倍,与PAS(可见图4a和和b),b),主要的,例如,128-折叠,与结构上相关的,但机械上不同药物(见于36)fenamisal(图4c和以及d)。d)。也就是说,fenamisal在其R-MIC 90处具有抑菌作用并且当在琼脂的恢复期存在木炭时,仅在浓度接近2个数量级时发挥杀菌活性。这表明,除非被木炭吸收,否则当从MIC板转移到基于琼脂的生长孔时,fenamisal继续抑制结核分枝杆菌的生长。
然后我们测试的第一代和第二线抗结核药物和硝唑尼特简编,抗感染药用于其它适应症具有针对活性的结核分枝杆菌 在体外(37,38)(图5至TO9)。9)。该CARA结果区分4个类别的化合物:非复制杀菌,复制杀菌,复制-抑菌,和双活性,这意味着无论是复制-抑菌或复制杀菌以及非复制杀菌(表1和AND33)。
复合 |
R活动a
|
NR活性(杀菌)a | 基于CARA结果的活动预测 | CFU结果的位置 | |||
---|---|---|---|---|---|---|---|
杀菌 |
抑菌
|
||||||
没有PAE | PAE | SW | |||||
PA-824 | +/- | + | - | - | + | 双活动; 等效R和NR活动; R-static +弱PAE | 图9 |
利福平 | + | 不适用b | N / A | N / A | +/- c | 双活动; R-杀菌,具有中等的NR活性 | 图8 |
莫西沙星 | + | N / A | N / A | N / A | +/- c | 双活动; 具有弱NR活性的R-杀菌剂 | 图S3是补充材料 |
羟基保泰松 | - | N / A | N / A | N / A | + | NR-杀菌 | 参考6 |
硝唑尼特 | +/- | N / A | +/- | +/- | + | NR-杀菌; 弱R活动(可能是静态的) | 参考37 |
异烟肼 | + | N / A | N / A | N / A | - | R-杀菌 | 参考4 |
卡那霉素 | + | N / A | N / A | N / A | - c | R-杀菌 | 图S3是补充材料 |
链霉素 | + | N / A | N / A | N / A | - | R-杀菌 | NT d |
TMC207 | - | + | - | - | - | R-抑菌 | 图9 |
乙胺丁醇 | - | - | + | +/- | - | R-抑菌+中度PAE | NT |
ethionamide药物 | - | - | + | +/- | - | R-抑菌+中度PAE | NT |
利奈唑胺 | - | - | + | + | - | R-抑菌+中度PAE | 图7 |
PAS | +/- | - | + | +/-e | - | R-抑菌+强PAE | 图S4是补充材料 |
Fenamisal | +/- | - | + | +/-e | - | R-抑菌+强PAE | 图S4是补充材料 |
严格的非复制活性分子的预期MIC 90,CARA和CFU结果显示在图5a和2,实施例7中。氧噻吩酮是一种非甾体抗炎药,之前已被确定为对非复制性结核分枝杆菌的选择性杀菌剂(6))。我们通过MIC和CARA测试羟基保泰松,同时复制结核分枝杆菌(图5b)和非复制性结核分枝杆菌(图5c)。NR-CARA数据与NR-MIC 90的数据平行,并正确预测羟基保泰松是一种选择性非复制活性化合物。正如R-MIC所预期的那样在数据中,R-CARA数据表明羟基保泰松没有可辨别的复制 - 杀菌活性。Nitazoxanide具有较弱的复制活性,并且在最小的非复制模型(7H9,pH 5.0,含有0.5mM NaNO 2 -)中对结核分枝杆菌具有杀菌作用(37)。从硝唑尼特处理的结核分枝杆菌的R(图5d)和NR(图5e)MIC 90和CARA获得的数据与公开的结果一致(37)。
严格复制的杀菌分子在R-MIC 90,R-CARA和R-CFU测定中显示活性(图6a和2,实施例1和2)。当使用NR-CARA时,减轻了导致有效复制活性物质的错误NR-MIC 90值的药物携带效应(图6a)。R-和NR-MIC 90为异烟肼和CARA数据(图6b和以及c),Ç),卡那霉素(图6d和ANDE),È)和链霉素(图6f和以及g)克与它们一致的是复制 - 杀菌化合物。NR-CARA清楚地证明INH(图6c)和链霉素(图6g)是非复制的无活性的,这表明NR-MIC 90数据是化合物携带的结果。
因为卡那霉素的R / NR MIC 90比率表明它是一种严格的复制活性化合物,我们预计NR-CARA结果可能来自化合物携带或抗生素后效应,而不是来自真正的非复制活性(图6e)。实际上,通过CFU测定对卡那霉素对非复制性结核分枝杆菌的活性进行的详细分析表明,随着药物浓度的增加,CFU适度降低,但未达到CARA预测的2至3 log 10杀灭(参见补充材料中的图S3b)。 )。因此,在某些情况下,R / NR MIC 90比率是正确解释CARA数据的重要因素。
复制-抑菌分子具有类似于复制杀菌化合物(的轮廓图7a中。和AND2,2,实施例3和4),但有以下区别:故障出现在R-CARA或的存在降低荧光与起始接种物相比,R-CARA中的静态窗口和<99%至99.9%CFU减少(图7a)。
对于PAS(图7b),fenamisal(图7d),TMC207(图7f),乙胺丁醇(图7h),利奈唑胺(图7j)和乙硫异烟胺(图7l),R-CARA结果没有跟踪R-MIC 90。R-CARA和R-MIC 90之间的静态窗口表明这些化合物具有抑菌作用,具有抗生素后效应,并且在测试的最高化合物浓度下可能仅具有杀菌活性。对于TMC207(图7f)和利奈唑胺(图7j)观察到大的静态窗口。利奈唑胺的结果证实了这种恶唑烷酮对复制具有抑菌作用的报道结核分枝杆菌(39)。相反,对于PAS和fenamisal,所述ÿ轴不得不扩展,以确定一个静态窗口(存在图7b和和d,d,插图)。PAS和fenamisal缺乏更明显的静态窗口可追溯到严重的抗生素后效应(参见补充材料中的图S4a和b)。
关于这些化合物的非复制活性,NR-CARA数据强烈表明PAS(图7c),fenamisal(图7e),TMC207(图7g),乙胺丁醇(图7i)和乙硫异烟胺(图7)都没有。.7m)具有显着的非复制活动。PAS,fenamisal和TMC207似乎在比其R-MIC 90高许多倍的浓度下具有非复制活性。虽然NR-MIC 90表明利奈唑胺可能在远高于其R-MIC 90值的浓度下杀死非复制性结核分枝杆菌(图7k)),NR-CARA结果明确预测利奈唑胺对非复制性结核分枝杆菌无活性(图7k)。通过CFU测定证实利奈唑胺的CARA预测用于复制(图7n)和非复制(图7o)结核分枝杆菌杆菌(表3)。
如上所述,双活性分子对复制结核分枝杆菌具有杀菌或抑菌作用,并且对非复制性结核分枝杆菌具有杀菌作用(图8a和2,实施例5和6)。PA-824,莫西沙星和利福平的R-MIC 90至NR-MIC 90比率表明它们是双活性化合物。该CARA数据表明,PA-824被复制,抑菌/非复制杀菌(图8b和以及c),Ç),莫西沙星复制杀菌/非复制杀菌(图8d和ANDE),È),和利福平被复制杀菌/非复制杀菌(图8F和以及g)。g)。CFU分析证实为利福平的CARA的预测(参见图8H和ANDI我的补充材料),莫西沙星(见图S3C和在补充材料d),和PA-824(更详细地描述图9a和和bb)。
该PA-824和TMC207分别为主要抑菌言下之意结核分枝杆菌是意想不到给出复制的条件下,使用测定CFU其他研究报道,PA-824和TMC207反对杀菌结核分枝杆菌 在体外和体内(40,41) 。为了测试是否在CARA板活性炭有可能影响的结论为PA-824和TMC207是否抑菌或杀菌,我们列举CFU在7H11-OADC板,缺乏或含有0.4%的活性炭(图9a至TOF )。F)。对于PA-824和TMC207,包含活性炭显着增加CFU计数,而包含木炭不影响莫西沙星或卡那霉素的CFU计数(参见补充材料中的图S3)。与已报道的相似(42),与第7天相比,另外7天的TMC207暴露(总共14天)导致杀伤增加(图9e); 然而杀保持在<3日志10时CFU进行计数在补充有活性炭琼脂平板上,这样的活性仍然可以通过杀菌活性的严格定义被分类为抑菌。在补充有活性炭的7H11-OADC平板上列举的CFU测定显示TMC207达到约2log 10杀灭非复制的多应激模型中的结核分枝杆菌(图7g),如NR-CARA- MBC≥99(12.5μg/ ml)所预测的。
因此,在补充或不补充0.4%活性炭的7H11-OADC琼脂平板上进行CFU测定增强了PA-824和TMC207的杀菌效果低于通常评分的印象,因为这一评分反映了处理后M的药物持续作用。结核杆菌是镀的。这通过以下实验证实。我们治疗结核分枝杆菌用30μg/ ml的PA-824或TMC207培养7天,并将未稀释的细胞涂布在琼脂平板上。我们在缺乏木炭的7H11-OADC平板上恢复了0到2个菌落。相反,当将相同的药物处理的未稀释细胞涂布在含木炭的7H11-OADC琼脂平板上时,有太多的菌落计数(参见补充材料中的表S1)。这清楚地说明了遗留药物给出错误的cidality和活性炭结合携带药物的能力。
我们应用CARA监测两种抗分枝杆菌药物的剂量和时间依赖性杀灭。测试利福平和乙胺丁醇对复制耻垢分枝杆菌的作用的时间过程的结果显示在图10中。在9种药物浓度下加上DMSO对照并在4个时间点(1,3,6和24小时)测试2种化合物,一式四份,仅使用4个CARA平板。
通过CFU测定(实验一式三份而不是一式四份)在同一实验中计算耻垢分枝杆菌将需要大约20个96孔微孔板稀释板(在每个中可以稀释4个测试条件,一式三份,从10 0开始)到10 -5含有细菌学琼脂)和大约~480三式培养皿枚举存活细胞。
因此,一个CARA板可以代替用于CFU测定的大约五个96孔稀释板和120个三样式培养皿。这些结果说明了CARA测定法在指示哪种药物浓度和时间点最适合以可控制的规模进行标准CFU测定中的效用。
自从Koch于1883年引入CFU测定以来,基于CFU的测定已经成为计算暴露于各种应激(包括抗生素)后存活的那些杆菌的金标准。已经探索了增加CFU测定通量的新方法(43)。标准CFU测定的一些限制促使我们开发CARA。在我们解决这些需求,目标是提高产量,缩短连续稀释,消除菌落费力计数,缩短读出时间,而钝,可以结转到增生测定法(测试剂的影响6,27,28),无论是溶液还是吸附细菌。CARA有助于建立通常被认为对标准CFU分析过于费力和耗时的试验实验(图10)。在CFU测定中,未经处理或用不同浓度的测试剂处理的细菌以及悬浮液中的任何测试剂在无测试剂的培养基中连续稀释,然后接种在生长支持琼脂上以使存活的杆菌生长作为殖民地。电镀是另一种稀释。例如,将10μl细菌悬浮液涂布在三培养板的一个区段中的8ml固体培养基上,将测试试剂稀释800倍。因此,在连续稀释和平板接种后,通常认为将具有细菌悬浮液的溶液中的测试试剂稀释至消光。然而,携带到琼脂中的测试剂(参见补充材料中的表S2)或吸附到细菌上的测试剂(图11)仍然可以抑制细菌生长。
在非复制的多重分析中,TMC207和PA-824是杀菌的。然而,TMC207对非复制性结核分枝杆菌的活性仅在远高于复制MIC 90的浓度下发现。在我们的研究中,TMC207和PA-824对复制结核分枝杆菌的活性与抑菌作用模式一致。这并不排除这些分子可能会在稍后的时间点或在人类宿主属于条件,其中TMC207和PA-824有临床益处下杀菌(44,- 47)。氟喹诺酮类药物在体外是抑菌还是杀菌剂量和时间依赖性(34,35),这种区别不一定与治疗结果有关(48)。
事实上,我们推测PA-824和TMC207在细胞质,膜,脂质或胶囊中的储备可能有助于药物的疗效(图11)。药物储备的位置和范围可以通过药物的物理化学特性来确定。细菌药物储备可能有助于剂量之间的抗生素后效应或迫使细菌在迁移到宿主中可能无法实现有效浓度的药物的位点时运输其自身的药物缓存。
比较MIC,CARA和CFU测定的结果说明了在溶液中或吸附到细胞中将测试试剂携带到CFU测定中的情况,显然导致高估了化合物在给定条件下的效力或误解其有效的条件。为了避免这些问题,我们建议在接触抗菌剂后,在用于计算结核分枝杆菌的琼脂中加入活性炭,无论该检测方法是否采用标准CFU或CARA形式。
对于从稀释系列到生长测定的抗感染药物的携带,关注并不新鲜。当TMC207携带到琼脂平板上时,其影响激发了将过量的牛血清白蛋白(BSA)添加到琼脂平板中以隔离TMC207用于CFU测定(49)。活性炭已被用来减轻药物残留在体外和从器官匀浆的结核分枝杆菌与抗结核药物(治疗感染的小鼠50,51)。在所测试的抗分枝杆菌化合物中,12个在24小时内几乎完全被活性炭结合(表2)。链霉素保持部分游离。考虑到链霉素具有最低的logP(-7.65),最高数量的H键供体和受体(14和19)和重原子(40),这可能与logP,极性表面积和可旋转键的组合有关。和最大的极性表面积(331)(参见补充材料中的表S2)。链霉素和乙胺丁醇具有最高数量的可旋转键(9)(参见补充材料中的表S2)。
活性炭可以隔离比BSA更广泛的化合物,并且更广泛地这样做,因此可以具有更普遍的用途。实际上,对于测试的12/12化合物,活性炭比BSA更广泛地结合化合物20分钟。预计小的亲水性药物如异烟肼(估计蛋白质结合<10%)与BSA结合的亲和力比TMC207低得多(估计结合蛋白> 99%)。嗜热军团菌,空肠弯曲杆菌,流感嗜血杆菌和百日咳博德特氏菌等苛刻微生物繁殖的细菌学培养基,通常补充活性炭来吸收有毒副产品。在诊所,活性炭用于吸收中毒和过量的化学物质,包括利福平,异烟肼和PAS过量(52,- 55)。
这里提供的大多数数据与活性炭的主要作用一致,即结合携带的化合物并防止它们在测定的生长期对细菌的恢复产生影响。但是,在某些情况下,活性炭可能会有不同的行为。例如,活性炭可以螯合琼脂或琼脂溶解于其中的7H11-OADC培养基中的组分,并且该组分可以与某些测试剂协同作用以在CFU的抗生素后恢复阶段期间杀死结核分枝杆菌。基于测定。例如,孔雀石绿是7H11基琼脂中的常见成分,可以增强细胞壁活性药物对分枝杆菌的抗生素后效应(56)); 也许活性木炭可以抵消这种效果。我们观察到结核分枝杆菌杆菌在含有活性炭的7H11-OADC平板上形成较小的菌落,这表明活性炭可以结合必需营养素,尽管不会消除形成菌落的能力。
使用活性炭的潜在混杂因素是它对某些化合物的亲和力可能高于其他化合物(表2)。如上所述,木炭与高浓度(30μg/ ml)的链霉素结合不良。虽然乙胺丁醇不像其他化合物那样有效地结合木炭,但它在20分钟时仍然被去除~97%。一些抑菌剂在其肉汤MIC或更高浓度下进行测试时,可阻止CARA平板上细菌的回收(图2); 另见补充材料中的S6d)。我们无法区分两种解释。这些药物在一个浓度范围内可能具有抑菌作用,在较高的范围内可以杀菌; 或者,当以高浓度使用时,它们可能发挥延长的抗生素后效应,其在性质上保持静止,即大大延长菌落出现在琼脂平板上的时间而不减少活细胞的数量。后一种现象对于PAS和fenamisal是深远的(参见补充材料中的图S4),这反映在7H11-OADC琼脂平板上严重减少的菌落大小。由于某些化合物的PAEs可能会阻碍CARA的预测能力,因此我们提出了特定的数据分析技术(表1和图2); 另见补充材料中的图S5和S6)。一旦确定了抗生素后效应,就有可能在化合物与化合物的基础上使CARA孵育超过7到10天; 然而,这种解决方案不适用于半高通量分析,其中许多化合物是头对头测试的。
一些分类为复制 - 抑菌的分子,例如fenamisal(图7e),在显着高于其R-MIC 90的浓度下导致NR-CARA荧光的剂量依赖性降低。这些化合物值得考虑作为候选双活性分子。虽然莫西沙星和fenamisal共享类似的R-和NR- MIC 90和CARA结果,fenamisal注意到为显著残留效应(图4c和以及d)d)和抗生素后效应(图S4),这使我们怀疑在NR-CARA中fenamisal的剂量依赖性荧光减少是人为的。最终,具有MIC和CARA的不确定活性指定的这些化合物将需要通过CFU测定进行评估。
CARA是半定量的。半最大刃天青荧光的时间与起始细菌数之间存在反比关系(57)。通过在单个时间点读取荧光,CARA具有相对小的动态范围,使得具有不高于背景的荧光的孔仅表明与细菌数量相比,细菌数量减少≥2至3log 10。背景荧光。因此,CARA可能不适用于感兴趣的存活差异<2 log 10的测定。
CARA可用于与其他细菌物种一起使用,但有必要为每种细菌物种定制CARA。例如,检测限为2至3 log 10 CFU,CARA可能无法准确区分药物对金黄色葡萄球菌的杀菌和抑菌作用,因为该属的抑菌定义在24中<3 log 10 kill H。快速分裂的生物如金黄色葡萄球菌对静态窗口的使用提出了挑战,静态窗口取决于细菌的生长速率和药物的抗生素后效应的持续时间,并且可能形成比一些测试剂完全结合的菌落更快的菌落。 CARA板中的木炭(表2)。我们建议优化的因素包括:接种物,细菌液体和固体培养基的选择,药物暴露时间,使用alamarBlue培养前培养CARA板的时间,以及使用具有良好表征的抑菌或化合物的化合物对测定进行严格测试杀菌活动。
仍有挑战需要解决。可以在来自DMSO处理的细胞的孔中发生的荧光漂白排除了数据标准化。CARA测量琼脂表面上细菌微菌落的荧光,其可显示出显着的异质性。重复之间的大误差给予CARA较差的Z'分数,使高通量筛选的CARA无效,其中人们在大多数无活性化合物的集合中寻找稀有活性化合物。相反,CARA的用途是鉴定已确定为活性化合物的剂量依赖性趋势。抑制细菌在琼脂培养基上再生的速率的强效抗生素后效应可能会对CARA预测产生负面影响。
驱动,以确定杀死的化合物结核分枝杆菌以各种方式呈现非复制(4,- 6,8,27,37,39,58,- 62)已经阻碍了的技术的缺乏来分析和进步这些分子筛选后。鉴定真正的非复制和双活性化合物是将化合物优先用于日益增加资源的工作的早期步骤,例如CFU测定,靶标鉴定和动物模型中的功效研究。CARA可以在辨别哪些化合物应该进入这一进程中发挥有用的作用。